自诱导培养基在甲醇毕赤酵母诱导外源蛋白中的应用
Auto-induction of Pichia pastoris AOX1 promoter for membrane protein expression
甲醇毕赤酵母已经被广泛应用在酶制剂,医药等领域,已经有很多蛋白在毕赤酵母体系中成功表达并工业话应用。
毕赤酵母表达体系具有比较复杂的过程,细胞增殖,诱导产酶必须严格分开, 以接触增殖培养基中甘油和葡萄糖的抑制作用。在摇瓶中,我们采取置换培养基,发酵罐中通过饥饿来实现解除甘油或葡萄糖的抑制。
作者通过优化获得了自诱导培养基(BYGM):100mM PBS(6.0),2.68% YNB,0.4%甘油,0.5%甲醇,8*10-5%生物素。
BMMY/BMGY培养基:酵母粉:1.0克,蛋白胨:2.0克,YNB:1.34克,0.1mol/L pH6.0(或者pH7.0)磷酸缓冲液,甘油:1.0毫升,加蒸馏水到100mL
BMG培养基:100 mmol/L K3PO4, 1.34% YNB, 0.00004% biotin, 1% glycerol
BYGM培养基是在BMG培养基基础上优化设计出的,作者通过设计不同水平的甘油含量,生物素含量,YNB含量,甲醇是否加入等条件,得出以下结论:
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2%的甘油完全抑制产酶
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在1%的甘油的前提下,2倍的YNB和生物素能够增加产量
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直接加入0.5%的甲醇成功的自诱导出目的产物,而且和人工置换培养基效果相同
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进一步对甘油浓度进行优化,确定0.4%的甘油浓度具有较好的表达效果
其培养基中增加了YNB的含量,降低了甘油的含量,并加了甲醇。作者通过对YNB含量和甘油含量的优化,最终得出自诱导培养基(BYGM):100mM PBS(6.0),2.68% YNB,0.4%甘油,0.5%甲醇,8*10-5%生物素。
作者在3L培养基中进行了放大,并取得了成功。进一步作者还在不同的表达系统,表达不同的外源蛋白情况下,测试了该培养基,并取得了成功。
重点:一般情况下,BMGY或BMG培养基中甘油含量是过量的,如果控制较低的含量,在菌体增值完全后,甘油含量正好消耗完全,可以直接添加甲醇进行诱导,关键在于甘油量的控制。
问题:
BMGY培养基是否可行?
工业上用的无机盐培养基是否可行,有没有必要。工业生产种一般有四个阶段,增值阶段,甘油补料阶段,饥饿阶段,甲醇诱导阶段,由于受到设备条件限制,甘油补料阶段一般就放弃进行,那么如果在增值阶段直接添加甲醇,让菌体提前适应甲醇,在溶氧反弹直接诱导是否可行?
至于该方法是否真的可行,需要实验室进行实验,希望知道结果的同学们可以持续关注。
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碳氮比的概念和优化方法
碳氮比(C/ N) :严格意义上应是指在微生物培养基中所含的碳源中的碳原子摩尔数与氮源中的氮原子摩尔数之比。(周德庆微生物学教程),在这里,我认为对于既能做碳源又能做氮源的物质应该及计算碳源又计算氮源。很多情况我们简单用培养基的碳源和氮源的比值来替代,但这是不准确的。另外由于一些培养基成分中的碳源不易利用,碳氮比也有用还原性碳源和粗蛋白之间的比值来替代,比如下式碳氮比的计算,就是用葡萄糖中的碳元素的摩尔浓度比上总蛋白中氮元素的摩尔质量浓度。
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染菌与控制是发酵圈永远绕不开的话题。降低染菌率是每一个发酵人应该认真学习和考虑的问题。而合理的应用灭菌、消毒和防腐方法是我们必备的技能。这也是我们在详细介绍发酵过程染菌防控之前需要介绍的内容之一。
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风波后董宇辉更火,我更加明白:阅读的厚度,决定人生的高度!
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关于Western Blot 你想要的都在这里
Western Blot(蛋白质免疫印迹)是细胞与分子生物学领域中常用的核心技术之一,其核心原理是通过凝胶电泳实现蛋白质的分子量分离,再将分离后的蛋白质转移至固相支持膜(如硝酸纤维素膜、PVDF膜),最后利用抗原与抗体的特异性结合反应,实现目标蛋白质的定性与半定量检测。该技术凭借高特异性、高灵敏度的优势,能够从细胞或组织提取的复杂蛋白质混合物中精准识别目标蛋白,为蛋白质相关研究提供直接的实验依据。
从技术本质来看,Western Blot的实现依赖三大关键环节:一是基于分子量的分离,利用SDS-PAGE凝胶的分子筛效应,使不同分子量的蛋白质在电场中呈现不同迁移速率,从而实现分离;二是固相转移,通过电场作用将凝胶中的蛋白质转移至膜上,形成稳定的蛋白印迹;三是特异性标记与检测,借助一抗对目标蛋白的特异性识别和二抗的信号放大作用,结合化学发光、荧光等检测方式,最终实现目标蛋白的可视化。相较于其他蛋白质检测技术,Western Blot兼具分离与鉴定功能,且操作流程相对可控,是生命科学研究中蛋白质分析的基础手段。 -

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